补体结合试验

简介

补体结合试验(complement fixation test,CFT)是经典途径的抗原抗体反应之一。该方法一般用于:①临床病毒性疾病的诊断;②病毒性传染病的流行病学调查;③病毒性抗原及相应抗体的检测;④病毒亚型的鉴定等。

原理

补体结合试验的基本原理是基于:1.有 3 个系统①反应系统,即已知的抗原(或抗体)与待测的抗体(或抗原);②补体系统;③指示系统,即绵羊红细胞(sheep red blood cell,SRBC)与相应溶血素,形成致敏红细胞。2.如果反应系统中存在待测的抗体(或抗原),则抗原抗体发生反应后可结合补体;再加入指示系统时,而不出现溶血,是为试验阳性。3.如果反应系统中不存在待检的抗体(或抗原),则在液体中仍有游离的补体存在,当加入指示系统时会出现溶血,是为补体结合试验阴性。

用途

补体结合试验一般用于:①临床病毒性疾病的诊断;②病毒性传染病的流行病学调查;③病毒性抗原及相应抗体的检测;④病毒亚型的鉴定等。

材料与仪器

器材:

①离心机

②培养箱

③注射器

④细菌滤器

试剂:

①材料:病毒抗原

②豚鼠新鲜血清

③4.1%SRBC

④Alsever 保存液

⑤甘油

⑥稀释液

⑦溶血素

步骤

补体结合试验的基本过程可分为如下几步:

(一)材料准备

1.病毒抗原从组织培养、鸡胚和动物试验中获得病毒抗原应适当提纯,纯度愈高,特异性愈强。如使用粗制抗原时,须经同样处理的正常组织作抗原对照,以识别待检血清中可能存在的、对正常组织成分的非特异性反应。

2.抗体免疫用的病毒抗原最好不是同一细胞或动物,以免发生交叉反应。血清样品应加热灭活处理,消除补体活性和非特异性抗补体活性。来源于人和豚鼠的抗体,灭活温度为 56 ℃;来源于家兔和马的抗体,灭活温度为 65 ℃。

3.补体检测人和哺乳动物血清,应用豚鼠新鲜血清补体,临用前制备。4.1%SRBC 制备从绵羊颈静脉无菌操作采血,放入含有 Alsever 保存液的三角烧瓶中(Alsever 液与羊血比例为 1:1),立即摇晃均匀 4℃ 冰箱保存备用,可使用 2~3 周。使用时用 10 倍体积生理盐水洗涤三次,每次以 2000 r/min 离心 10 分钟,吸取离心沉积的红细胞 1 mL,再加 99 mL 生理盐水,即成 1% 的红细胞悬液。

5.溶血素用绵羊红细胞免疫家兔,效价达到 1:4000 可获得;56 ℃ 30 分钟灭活,加甘油后长期保存。

6.稀释液含钙镁离子的生理盐水,可维持补体的稳定。

(二)所用试剂的滴定

1.溶血素的滴定 先将溶血素稀释成 1:1000~1:100 的稀释液,再依次加入溶血素 0.1 mL,钙镁盐水 0.2 mL,1:60 补体 0.2 mL、1% 绵羊红细胞 0.1 mL,混匀后再水浴。结果判定:完全溶血的试管液体红色透明,离心后见少许细胞;不溶血的试管液体混浊,放置后见红细胞沉淀,上清无色透明。溶血素效价的测定:以完全溶血的最高稀释倍数确定为 1 个单位。

2.确实单位(exact unit)将完全溶血的最小补体量作为一个「确实单位」,1:60 补体最小量 0.12 mL 可产生完全溶血,为 1 个确实单位。正式试验时使用 2 个确实单位。(2x0.12):60=0.2:X,得 X=50,即实际应用中的 2 个补体确实单位为 1:50 的补体 0.2 mL。补体的滴定:补体不稳定,每次试验前需滴定。

(三)抗原和抗体的滴定

1.找出抗原和抗体最佳比例,用方阵滴定法。

(1)将抗原和抗血清经 56 ℃ 30 分钟灭活补体后,用钙镁盐水分别将抗原和抗体进行倍比稀释(1:521~1:8)。

(2)横向前 7 排管中加不同稀释度的抗原 0.1 mL;纵向前 7 列管中加不同稀释度的抗血清溶液 0.1 mL;第八排管和第 8 列管中另补充钙镁盐水各 0.1 mL。

(3)各管加含两个确实单位的补体 0.2 mL。

(4)4 ℃ 冰箱过夜。因为一般来说,在 4 ℃ 冰箱过夜较 37 ℃1 小时可固定更多的补体,且比较敏感方便,故大多数采用 4 ℃ 冰箱过夜。

(5)最后加致敏 SRBC。

(6)结果判定:选择抗原和抗体呈强阳性反应(完全不溶血)的最高稀释度作为抗体的效价;由表 4-6 可知 1:64 的抗原和 1:32 的抗血清分别为 1U;正式试验中,抗原一般用 2~4U(1:32~1:16),抗血清用 4U(1:8)。

2.正式试验

(1)配制各种试剂。

(2)阴性和阳性对照应分别为明确的溶血和不溶血。

(3)补体对照管中 2U 应全溶,若不完全溶血表明补体量不够,0.5U 应不溶,若完全溶血则表明补体含量过多。

注意事项

(1)抗原和抗体纯度和滴度要够;补体保存应低温保存,不要反复冻融;补体含量常用 0.5~2U。

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