近些年来,随着PCR 技术的出现,以及DNA 克隆和测序方法的发展,对大量质粒载体和重组子的需求也大大减少。因此,本方案曾一度广泛应用,但已经被更为快速和简便的柱纯化方法代替。在本方案中,通过碱裂解法的放大( Bimboim and Doly 1979 ) ,质粒DNA 可从清亮的细菌裂解物中通过含有溴化乙锭的CsCl 梯度离心来进行纯化。
无论是高拷贝数的质粒还是低拷贝数的质粒,通过这种方法可以得到每毫升3~ 5μg的DNA 。重组子的质粒一般产量较少,这取决于克隆的DNA 片段的大小和特点。
材料
试剂
琼脂糖凝胶(见步骤8 和19)
碱裂解液I<A>
- 若用柱层析进一步纯化所制备的质粒DNA,无菌的碱裂解液Ⅰ 在使用前可补充适当体积的无DNA 酶的RNA 酶( 20mg/mL, 胰RNA 酶),使终浓度为l00μg/mL , 若用其他方法纯化DNA , 不推荐在此步骤中加RNA酶。
碱裂解液II<A>
- 现配现用,室温使用。
碱裂解液III<A>
- 用于筛选质粒的抗生素
转化了目的质粒的细菌克隆
氯霉素(3 4mg/mL ) (可选;见步骤4 )
乙醇
异丙醇
溶菌酶( l0mg/mL )
限制性内切核酸酶
培养基( LB 、YT 或者Te1Tific Broth) <A> ,预热到37 °C
STE<A> ,冰浴
TE (pH8.0) <A>
设备
有盖的培养瓶( l25mL, 2L )
摇床,预设到37 °C
RC6 Plus 离心机带转头,合适容量( Thermo Scientific )
分光光度计
方法
细胞制备
为确保培养物通气良好:
- 试管的体积应该至少比细菌培养物的体积大4 倍。试管盖要盖得松些。
- 培养物要在剧烈振荡下培养。
- 最后菌液的OD600应为0.4 。由于不同菌株的生长速度不同,可稍微延长或缩短培养时间,使最终的OD 值为0.4 。
细胞裂解
9.将步骤7 中冻存的细菌在室温下放置5 ~ l0min 使其解冻,用18mL ( l0mL ) 碱裂解液I 重悬。如果步骤4 中使用了氯霉素的菌液,则使用括号中的体积数。
10.加2mL ( lmL ) 新配制的l0mg/mL 溶菌酶。
11.加40mL (20mL) 新配制的碱裂解液II 。盖上离心管盖,轻轻颠倒数次,彻底混匀,室温放置5 ~ 10min 。
- 延长超螺旋DNA 暴露于碱的时间会使其不可逆变性,所产生的环状卷曲DNA 不能被限制酶切割,而且它在琼脂糖电泳中的迁移率为正常超螺旋DNA 的2 倍,难以被溴化乙锭染色。从细菌中用碱裂解法提质粒时可能会看到微量的这种DNA 。
在碱裂解液Ⅲ 中最好使用乙酸钾而非乙酸钠,因为十二烧基乙酸钾盐比钠盐难溶。
- 不能形成紧密沉淀的原因一般是加入碱裂解液II 时没有充分混匀(步骤II ) 。如果细菌碎片不能形成紧密的沉淀,以20000g 再次离心15min, 将上清移入干净的离心管。转移时可用4 层纱布过滤上清,可以除去黏稠的基因组DNA 和蛋白质沉淀。
质粒DNA 回收
- 若在4℃ 离心会使盐沉淀下来。
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