RNA干扰(RNAi)实验原理与技术体系

一、RNA干扰分子机制解析

1. 双链RNA识别与加工

  • Dicer酶的作用机制
    RNase III家族成员Dicer通过ATP依赖性识别双链RNA(dsRNA),切割生成具有3'端2碱基突出的21-23nt siRNA片段。该过程包含两步切割:
    ① 初级dsRNA的3'端逐步切割
    ② 生成具有5'磷酸和3'羟基的双链siRNA

  • 植物特异性调控路径
    启动子区dsRNA可被加工为21-23nt片段,通过DNA甲基化修饰沉默同源基因,形成表观遗传调控。

2. 基因沉默执行系统

  • RISC复合体组装
    siRNA与Argonaute蛋白结合形成RISC,通过ATP依赖性解旋过程释放引导链。

  • mRNA靶向切割
    RISC复合体通过碱基配对定位同源mRNA,在距离siRNA 3'端12nt处切割,该过程涉及未明确的核酸酶活性。

二、RNAi实验技术体系

(一)siRNA设计策略

1. 序列筛选原则

  • 靶点选择标准

    • 起始密码子下游优先(避开UTR区)
    • GC含量45%-55%(Tuschl规则)
    • 独特序列(BLAST验证)
  • 在线工具推荐

    平台名称 特色功能
    Dharmacon 荧光标记siRNA设计
    RNAiDB 公开发表siRNA数据库
    MIT siRNA库 疾病相关靶点集合

2. 对照实验设计

  • 阴性对照构建
    采用序列打乱(scrambled)或异源物种对照,需验证其与实验体系的无关性。

(二)siRNA制备方法对比

方法 原理 适用场景 技术优势 局限性
化学合成 直接合成双链siRNA 确认有效序列后的规模化制备 高特异性 成本高
体外转录 T7 RNA聚合酶合成发夹RNA 多序列快速筛选 成本低(1/10化学合成量) 产量限制
RNase III消化 长dsRNA体外切割 快速功能研究 节省筛选时间 可能脱靶
表达载体 U6/H1启动子驱动shRNA 长期基因沉默 稳定表达 克隆耗时
SECs(表达框架) PCR扩增pol III表达盒 高通量筛选 1日完成构建 转染效率低

(三)实验优化要点

  1. 转染效率提升

    • 使用脂质体(Lipofectamine)或阳离子聚合物
    • 优化siRNA浓度(20-100nM)与细胞密度
  2. 效果验证体系

    • WB检测蛋白水平
    • qRT-PCR验证mRNA降解
    • 功能表型分析(如细胞增殖、凋亡检测)
  3. 脱靶效应控制

    • 使用多个非重叠siRNA验证
    • 结合CRISPRi/a系统互补验证

三、技术发展趋势

  1. 新型递送系统

    • 纳米颗粒载体(LNP)
    • 组织特异性靶向修饰
  2. 高通量筛选平台

    • 全基因组siRNA文库
    • 智能算法辅助设计(如DeepDesign)
  3. 临床转化研究

    • siRNA药物(如Patisiran)
    • 基于外泌体的体内递送
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